Изучение свободно-радикального окисления у онкологических больных
Аннотация
Изучено состояние прооксидантной и антиоксидантной систем у больных раком желудка, в зависимости от стадии заболевания в опухолевых тканях в сравнении с нетрансформированной слизистой желудка, а также проанализирована взаимосвязь обменов антиоксидантной/прооксидантной систем и обмена нуклеотидов. Материалом были опухолевые и смежные ткани желудка 35 больных в возрасте 40-80 лет.
Изучили активность ферментов обмена пуриновых нуклеотидов – аденозиндезаминазу (АДА) и ксантиноксидазу (КО), как показатели прооксидантной системы; антиоксидантную защиту – глутатионпероксидазу (ГПО) и супероксиддисмутазу (СОД); уровень нитратов/нитритов (NOх) и показатели окислительной модификации белков (ОМБ) – 2,4-динитрофенилгидразоны. Методом изучения активностей ферментов, уровня NOх и 2,4‑динитрофенилгидразонов была спектрофотометрия.
Нами установлено увеличение активности АДА, КО и снижение ГПО как при I-II стадии, так и на III-IV стадиях рака желудка. В обоих случаях отмечено увеличение уровня NOx и ОМБ в опухолевой ткани относительно нетрансформированной слизистой желудка. Изменение СОД имеет разнонаправленный характер – на ранних стадиях рака происходит снижение активности фермента (в 5,2 раза), а на поздних повышение (в 2,4 раза).
Литература
1. Иванилов А.К. Заболеваемость злокачественными новообразованиями в мире, РФ и отдельных её регионах (обзор литературы). Молодой ученый. 2014;2:337-339.
2. Рыбалкина Д.Х., Дюсембаева Н.К., Шпаков А.Е. [и др.]. Обзор современных эпидемиологических аспектов по онкопатологии. Гигиена труда и медицинская экология. 2015; 4(49):31-48.
3. Каприн А.Д., Старинский В.В., Петрова Г.В. Злокачественные новообразования в России в 2015 году (заболеваемость и смертность). М.: МНИОИ им. П.А. Герцена, филиал ФГБУ «НМИРЦ» Минздрава России; 2017.
4. Полунин Г.Е., Седаков И.Е., Зинкович И.И. [и др.]. Энергетический статус эритроцитов у больных с неспецифическим язвенным колитом и раком толстой кишки на фоне терапии лактатом натрия. Таврический медико-биологический вестник. 2012;15(3):200-202.
5. Pourahmad J., Salimi A., Seydi E. Role of Oxygen Free Radicals in Cancer Development and Treatment. Free Radicals and Diseases. 2016. Available at: https://www.intechopen.com/books/free-radicals-and-diseases/role-of-oxygen-free-radicals-in-cancer-development-and-treatment. doi: 10.5772/64787.
6. Лисица А.В., Пономаренко Е.А., Лохов П.Г., Арчаков А.И. Постгеномная медицина: альтернатива биомаркерам. Вестник Российской академии медицинских наук. 2016;71(3). doi:10.15690/vramn647.
7. He Y.C., Zhou F.L., Shen Y. [et al.]. Apoptotic death of cancer stem cells for cancer therapy. Int. J. Mol. Sci. 2014;15(5):8335-8351. doi: 10.3390/ijms15058335.
8. Li T., Guo H., Zhao X. [et al.]. Gastric cancer cell proliferation and survival is enabled by a cyclophilin B/STAT3/microRNA-520d-5p signaling feedback loop. Cancer Res. 2017;77(5). doi: 10.1158/0008-5472.CAN-16-0357.
9. Vermorken, A.J.M., Zhu J., Andres E. Obesity and colorectal cancer risk: the role of oxidative stress. Gut. 2014;63(3):529-530. doi: 10.1136/gutjnl-2013-304701.
10. Дзасохов А.С. Патогенетические аспекты опухолевого роста в свете тканевой теории канцерогенеза (краткий литературный обзор). ВНМТ. 2012;19(1):179-181.
11. Tritsch G.L. Validity of the continuous spectrophotometric assay of Kalckar for adenosine deaminase activity. Anal. Biochem. 1983;129(1):207-209.
12. Медицинские лабораторные технологии: руководство по клинической лабораторной диагностике: в 2 т. Под ред. А.И. Карпищенко. 3-е изд., перераб. и доп. Т. 2. М.: ГЕОТАР-Медиа; 2013:40-41.
13. Макаревич О.П., Голиков П.П. Активность супероксиддисмутазы крови в острый период различных заболеваний. Лаб. дело. 1983;6:24-27.
14. Moin V.M. A simple and specific method for determining glutathione peroxidase activity in erythrocytes. Lab. Delo. 1986;12:724-727.
15. Andriichuk A., Tkachenko H., Tkachova I. Oxidative Stress Biomarkers and Erythrocytes Hemolysis in Well-Trained Equine Athletes Before and After Exercise. J. of Equine Veterinary Sci. 2016;36:32-43. doi:10.1016/j.jevs.2015.09.011.
16. Мажитова М.В. Спектрофотометрическое определение уровня метаболитов монооксида азота в плазме крови и ткани мозга белых крыс. Современные проблемы науки и образования. 2011;3. Доступно по: http://www.science-education.ru/97-4655.
17. Унанян Л.С., Соцкий П., Хачатрян Л.Г. [и др.]. Окислительная модификация белков сыворотки крови белых крыс под влиянием шума и α2-адреноблокаторов. Биолог. журн. Армении. 2010;1(62):79-83.
18. Lowry O.H., Rosebrough N.J., Farr A.L., Randall R.J. Protein measurement with the Folin phenol reagent. J. Biol. Chem. 1951;193(1):265-275.
19. Шатова О.П. Роль лактата в аденозинергической иммуносупрессиии. Питання експериментальної та клінічної медицини. 2013;2(17):153-159.
20. Thakur S., Du J., Hourani S. [et al.] Inactivation of adenosine A2A receptor attenuates basal and angiotensin II-induced ROS production by Nox2 in endothelial cells. Biol. Chem. 2010;285(51):40104-40113. doi: 10.1074/jbc.M110.184606.
21. Осинский C., Ваупель П. Микрофизиология опухолей. К.: Наукова думка; 2009.
22. Rios-Arrabal S., Artacho-Cordón F., León J. [et al.]. Involvement of free radicals in breast cancer. SpringerPlus. 2013. Available at: http://doi.org/10.1186/2193-1801-2-404.
23. Kiruthiga P.V., Shafreen R.B., Pandian S.K. [et al.]. Protective effect of silymarin on erythrocyte haemolysate against benzo(a)pyrene and exogenous reactive oxygen species (H2O2) induced oxidative stress. Chemosphere. 2007;68(8):1511-1518. doi: 10.1016/j.chemosphere.2007.03.015
24. Zhang D.X., Borbouse L., Gebremedhin D. [et al.]. H2O2-induced dilation in human coronary arterioles: role of protein kinase G dimerization and large-conductance Ca2+-activated K+ channel activation. Circ Res. 2012;110(3):471-480. doi: 10.1161/CIRCRESAHA.111.258871.
2. Рыбалкина Д.Х., Дюсембаева Н.К., Шпаков А.Е. [и др.]. Обзор современных эпидемиологических аспектов по онкопатологии. Гигиена труда и медицинская экология. 2015; 4(49):31-48.
3. Каприн А.Д., Старинский В.В., Петрова Г.В. Злокачественные новообразования в России в 2015 году (заболеваемость и смертность). М.: МНИОИ им. П.А. Герцена, филиал ФГБУ «НМИРЦ» Минздрава России; 2017.
4. Полунин Г.Е., Седаков И.Е., Зинкович И.И. [и др.]. Энергетический статус эритроцитов у больных с неспецифическим язвенным колитом и раком толстой кишки на фоне терапии лактатом натрия. Таврический медико-биологический вестник. 2012;15(3):200-202.
5. Pourahmad J., Salimi A., Seydi E. Role of Oxygen Free Radicals in Cancer Development and Treatment. Free Radicals and Diseases. 2016. Available at: https://www.intechopen.com/books/free-radicals-and-diseases/role-of-oxygen-free-radicals-in-cancer-development-and-treatment. doi: 10.5772/64787.
6. Лисица А.В., Пономаренко Е.А., Лохов П.Г., Арчаков А.И. Постгеномная медицина: альтернатива биомаркерам. Вестник Российской академии медицинских наук. 2016;71(3). doi:10.15690/vramn647.
7. He Y.C., Zhou F.L., Shen Y. [et al.]. Apoptotic death of cancer stem cells for cancer therapy. Int. J. Mol. Sci. 2014;15(5):8335-8351. doi: 10.3390/ijms15058335.
8. Li T., Guo H., Zhao X. [et al.]. Gastric cancer cell proliferation and survival is enabled by a cyclophilin B/STAT3/microRNA-520d-5p signaling feedback loop. Cancer Res. 2017;77(5). doi: 10.1158/0008-5472.CAN-16-0357.
9. Vermorken, A.J.M., Zhu J., Andres E. Obesity and colorectal cancer risk: the role of oxidative stress. Gut. 2014;63(3):529-530. doi: 10.1136/gutjnl-2013-304701.
10. Дзасохов А.С. Патогенетические аспекты опухолевого роста в свете тканевой теории канцерогенеза (краткий литературный обзор). ВНМТ. 2012;19(1):179-181.
11. Tritsch G.L. Validity of the continuous spectrophotometric assay of Kalckar for adenosine deaminase activity. Anal. Biochem. 1983;129(1):207-209.
12. Медицинские лабораторные технологии: руководство по клинической лабораторной диагностике: в 2 т. Под ред. А.И. Карпищенко. 3-е изд., перераб. и доп. Т. 2. М.: ГЕОТАР-Медиа; 2013:40-41.
13. Макаревич О.П., Голиков П.П. Активность супероксиддисмутазы крови в острый период различных заболеваний. Лаб. дело. 1983;6:24-27.
14. Moin V.M. A simple and specific method for determining glutathione peroxidase activity in erythrocytes. Lab. Delo. 1986;12:724-727.
15. Andriichuk A., Tkachenko H., Tkachova I. Oxidative Stress Biomarkers and Erythrocytes Hemolysis in Well-Trained Equine Athletes Before and After Exercise. J. of Equine Veterinary Sci. 2016;36:32-43. doi:10.1016/j.jevs.2015.09.011.
16. Мажитова М.В. Спектрофотометрическое определение уровня метаболитов монооксида азота в плазме крови и ткани мозга белых крыс. Современные проблемы науки и образования. 2011;3. Доступно по: http://www.science-education.ru/97-4655.
17. Унанян Л.С., Соцкий П., Хачатрян Л.Г. [и др.]. Окислительная модификация белков сыворотки крови белых крыс под влиянием шума и α2-адреноблокаторов. Биолог. журн. Армении. 2010;1(62):79-83.
18. Lowry O.H., Rosebrough N.J., Farr A.L., Randall R.J. Protein measurement with the Folin phenol reagent. J. Biol. Chem. 1951;193(1):265-275.
19. Шатова О.П. Роль лактата в аденозинергической иммуносупрессиии. Питання експериментальної та клінічної медицини. 2013;2(17):153-159.
20. Thakur S., Du J., Hourani S. [et al.] Inactivation of adenosine A2A receptor attenuates basal and angiotensin II-induced ROS production by Nox2 in endothelial cells. Biol. Chem. 2010;285(51):40104-40113. doi: 10.1074/jbc.M110.184606.
21. Осинский C., Ваупель П. Микрофизиология опухолей. К.: Наукова думка; 2009.
22. Rios-Arrabal S., Artacho-Cordón F., León J. [et al.]. Involvement of free radicals in breast cancer. SpringerPlus. 2013. Available at: http://doi.org/10.1186/2193-1801-2-404.
23. Kiruthiga P.V., Shafreen R.B., Pandian S.K. [et al.]. Protective effect of silymarin on erythrocyte haemolysate against benzo(a)pyrene and exogenous reactive oxygen species (H2O2) induced oxidative stress. Chemosphere. 2007;68(8):1511-1518. doi: 10.1016/j.chemosphere.2007.03.015
24. Zhang D.X., Borbouse L., Gebremedhin D. [et al.]. H2O2-induced dilation in human coronary arterioles: role of protein kinase G dimerization and large-conductance Ca2+-activated K+ channel activation. Circ Res. 2012;110(3):471-480. doi: 10.1161/CIRCRESAHA.111.258871.
Опубликована
2017-11-29
Как цитировать
ЗУЙКОВ, С. А..
Изучение свободно-радикального окисления у онкологических больных.
Новообразование, [S.l.], v. 9, n. 3, p. 181 - 185, ноя. 2017.
ISSN 2521-117X.
Доступно на: <http://donetsk-onco.com/neoplasm/index.php/Neoplasm/article/view/217>. Дата доступа: 26 апр. 2024
doi: https://doi.org/10.26435/neoplasm.v9i3.217.
Раздел
Оригинальные статьи
